Общепрофилактические и специальные ветеринарные мероприятия

В неблагополучных хозяйствах по инфекционным болезням овец с поражением репродуктивных органов нами проводился комплекс общепрофилактических и специальных ветеринарных мероприятий по следующей схеме.

Необходимость профилактики инфекционных болезней овец с поражением репродуктивных органов обусловлена зооантропонозным характером некоторых из них (листериоз, хламидиоз, сальмонеллез, кампилобактериоз) и определенной опасностью, которую они представляют для людей.

Проведение общих и специфических профилактических мероприятий предусматривало следующее:

1. Не допускался ввод вновь поступивших животных в общее стадо без предварительного карантинирования их в течение 30 дней.

2. Во время карантина проводили клиническое обследование овец и выявляли животных, являющихся скрытыми источниками возбудителей инфекционных заболеваний путем проведения комплексной диагностики.

3. Вели учет случаев абортов, мертворождения и падежа животных и направляли патматериал в ветлабораторию с обязательным бактериологическим исследованием, типизацией и идентификацией выделенных микроорганизмов.

4. При маститах проводили бактериологическое исследование молока. Отбор и направление материалов на бактериологические исследования проводили в соответствии с инструкцией.

5. Оценивали условия содержания овец, осуществляли контроль на станциях искусственного осеменения.

6. Проводили технологические дезинфекции помещений, выгульных площадок, инвентаря, транспорта.

7. Проводили дератизацию на территории ферм и на прилегающих зонах, учитывая сезонную миграцию грызунов. Осуществляли комплекс противоклещевых мероприятий.

8. Повышали неспецифическую реактивность организма животных.

9. В случае угрозы заноса возбудителей болезни в хозяйство проводили профилактическую комплексную вакцинацию овец или использовали ассоциированные вакцины.

10. Вакцинировали животных против инфекционных заболеваний:

- при выявлении клинически больных овец с окончательно установленным диагнозом;

- при наличии абортов инфекционной этиологии;

- при наличии природных очагов и стационарного благополучия по инфекционным болезням.

11. При специфической профилактике инфекционных болезней учитывали составы выделенных ассоциатов возбудителей инфекции, эпизоотическую ситуацию.

В соответствии с разработанной нами схемой профилактических мероприятий на станции искусственного осеменения животных проводился контроль качества спермы.

Исследовали сперму от баранов-производителей возраста 2-3 лет (всего 10 проб). Определяли: цвет, запах, консистенцию, объем эякулята, густоту, активность, процент живых и мертвых спермиев, процент патологических форм, концентрацию спермы по общепринятым методикам. Проводили бактериологический анализ спермы производителей.

В результате проведенных исследований было установлено соответствие качества спермы баранов основным нормативным показателям: объем эякулята 1,0 мл, цвет белый с желтоватым оттенком, запах жиропота, густая, активность 9-10 баллов, концентрация 2,2-2,8 млрд/мл, живых спермиев 92-95%, патологических форм 2,0- 4,0 % (допускается до 14%).

Бактериологический анализ проб спермы от баранов-производителей показал следующее: в двух образцах была выделена культура кишечной палочки (не патогенная для белых мышей). В одной пробе выделена культура Staphylococcus aureus.

На пункте искусственного осеменения овец проводилась санитарная оценка технологических процессов. С помощью стерильного физиологического раствора делали смывы с подготовленной искусственной вагины, шприца-катетера и влагалищного зеркала. Определяли их бактериологическую загрязненность. Также определяли микробную и грибковую загрязненность воздуха лаборатории, манежа и помещения для производителей. Были выделены Streptococcus, E.coli серотипов 09, 078, Staphylococcus aureus.

Проводилась дезинфекция помещений после предварительной механической очистки овчарен и выгульных площадок, кормушек и поилок. В период ягнения дезинфицировали по мере необходимости родильные секции, клетки-кучки, групповые оцарки для маток с ягнятами (в случае аборта и падежа животных). Проводили контроль за качеством дезинфекциив соответствии с методикой, изложенной в действующих "Правилах проведения дезинфекции и дезинвазии объектов государственного ветеринарного надзора" (2002г).

С этой целью в опытном хозяйстве использовали средство Дезконтэн(организация-производитель ООО «ДЕЗКОН» г.Москва, Россия).

1. Дезконтэн - дезинфицирующее средство, содержащее в качестве действующего вещества тетраметилендиэтилентетрамин (35%), а также поверхностно-активные вещества (алкилдиметилбензиламмоний хлорид 8%, дидецилдиметиламмоний хлорид 7%), краситель (0,02%), отдушку (1%) и воду (до 100%).

По внешнему виду представляет собой прозрачную жидкость от светло-желтого до светло-коричневого цвета со слабым специфическим запахом, смешивается с водой в любых соотношениях.

2. Дезконтэн выпускают расфасованным по 1,0; 5,0 или 10 л полиэтиленовых канистрах, укупоренные навинчиваемыми, плотно закрывающимися крышками.

3. Дезконтэн хранят в защищенных от влаги и солнечных лучей, хорошо вентилируемых, недоступных для посторонних лиц и животных помещениях, при температуре от 0^оС до 30°С.

Срок годности Дезконтэна при соблюдении условий хранения составляет 1 год со дня изготовления. Срок хранения рабочих растворов - 30 суток.

4. Дезконтэн обладает широким спектром действия в отношении грамположительных и грамотрицательных бактерий, вирусов и грибов. Дезинфицирующая активность обусловлена его способностью проникать в бактериальные клетки и вирусы, взаимодействовать с аминогруппами пуриновых и пиримидиновых оснований нуклеиновых кислот, блокируя их матрично-генетическую функцию.

5. По степени воздействия на организм Дезконтэн относится к 3 классу умеренно опасных веществ в соответствии с ГОСТ 12.1.007-76. В насыщающих концентрациях паров мало опасен (4 класс по степени летучести). В концентрированном виде проявляет умеренно выраженное местно-раздражающее действие на слизистые оболочки глаз и кожу. Обладает слабо выраженными кумулятивными свойствами и сенсибилизирующим действием. В рекомендуемых для применения концентрациях, не вызывает раздражения органов дыхательных путей, слизистых оболочек глаз и кожи. Дезконтэн не обладает коррозионными свойствами, не портит изделия из пластика, резины и дерева, не обесцвечивает и не портит ткани, не фиксирует органические загрязнения.

1. Перед проведением дезинфекции проводили тщательную механическую очистку, мойку и обезжиривание обрабатываемых поверхностей, т.к. органические загрязнения снижают дезинфицирующую активность средства.

2. Дезконтэн применяли для профилактической и вынужденной дезинфекции овцеводческих помещений, находящегося в них технологического оборудования, вспомогательных объектов овцеводства и инвентаря по уходу за животными;

3. Дезинфекцию проводили путем мелкокапельного орошения поверхностей помещений и технологического оборудования в отсутствие животных с использованием дезустановок.

Рабочие растворы готовили путем добавления соответствующих количеств Дезконтэна к водопроводной воде. При расчете концентрации рабочих растворов препарат принимается за 100%-ое вещество (Таблица 9).

Расчет концентрации рабочих растворов Дезконтена

4. Профилактическую дезинфекцию поверхностей овцеводческих помещений и технологического оборудования проводили 0,2-0,5% раствором при норме расхода 0,3 - 0,5л/м² и экспозиции 6ч.

5. Допускалось проведение локальной дезинфекции отдельных свободных от животных станкомест в занятых овцеводческих помещениях, отдельных единиц оборудования и участков поверхности (столов, пола, стен и др.) при условии наличия вентиляции помещений и отсутствия людей и животных в непосредственной близости к обрабатываемым объектам.

6. По истечении установленной экспозиции обеззараживания кормушки, поилки и другие доступные для животных участки поверхностей, места непосредственного контакта с сырьем, продукцией животного происхождения, места возможного скопления остатков Дезконтэна обмывали водой. С остальных поверхностей смывания остатков Дезконтэна не требовалось. Животных вводили в помещения после проветривания (открывали окна, двери, люки, включали вентиляцию) и полного исчезновения запаха.

7. В ходе исследований была определена кратность проведения дезинфекции животноводческих объектов. Установлено, что уровень микробной обсемененности, остается сравнительно низким на одинаковом уровне от 2х до 6ти суток. На 7е – 8е сутки происходит его резкое повышение более чем на 60-80%. Исходя из этого, данное мероприятие проводили каждые 7 дней.

8. Кроме того, установлено, что в первые 10 суток при систематическом применении препарата «Дезконтэн» после механической очистки и мойки горячей водой контаминация снижалась на 10-12% от первоначального уровня. После систематической дезинфекции через 20-30 суток степень контаминации снижалась на 20-30% от первоначальной.

Проанализировав результаты сравнительных испытаний ряда дезсредств, проведенных организацией – производителем ООО «ДЕЗКОН» г.Москва, Россия совместно с ГНУ ВНИИВСГЭ (РАСХН), ФГУЗ Волгоградским НИПЧИ (Роспотребнадзор) и учитывая результаты собственных исследований мы пришли к выводу, что дезинфицируемое средство Дезконтен обладает высокой антимикробной активностью, способно обеспечить инактивацию микроорганизмов в короткие сроки при малых концентрациях действующих веществ. Препарат хорошо растворим в воде при температуре от 2⁰С. Обладает низкой коррозионной активностью в отношении различных материалов и оборудования, низкой токсичностью для человека, животных. Стоимость одной обработки 1м² при расходе 0,5л рабочего раствора на 1м² невысокая, составляет 0,85-1,43 руб. Средство Дезконтен отвечает требованиям, предъявляемым к современным средствам дезинфекции для ветеринарии и может использоваться для профилактики инфекционных болезней овец.

В последнее время появился ряд новых дезинфицирующих средств, способных остановить распространение заболеваний. Данные средства легализованы органами Россельхознадзора для применения на территории Российской Федерации. Эффективность этих препаратов подтверждена широкими научными и производственными опытами.

Сравнительный анализ дезинфекционных средств, применяемых в ветеринарии.

В системе ветеринарной санитарии применяются дезсредства, предназначенные для проведения профилактической и вынужденной дезинфекции при болезнях бактериальной и вирусной этиологии I и II группы.

II группа – контроль по золотистому стафилококку.

Критерием стоимости дезсредства является количество и концентрация рабочего раствора, необходимого для обработки 1м² поверхности.

Количество и концентрация рабочих растворов зависит от группы устойчивости возбудителей (I и II) и материала обрабатываемой поверхности (бетон, металл, кафельная плитка и т.д.), а также времени инактивации бактерий и вирусов (Таблица 10).

Сравнительная характеристика дезсредств, применяемых в ветеринарии

Специфическая профилактика инфекционных болезней овец с поражением репродуктивных органов.

В период осеменения овцематок в опытном хозяйстве проводилась профилактическая иммунизация животных с использованием вакцины против листериоза овец.

Опыт проводили на 30 овцах в ОПХ «Темнолесское», Шпаковского района Ставропольского края. Перед постановкой опыта провели выборочное клинико-гематологическое исследование. Установленные показатели соответствовали физиологической норме для данного вида животных: средняя температура тела 39,1 ± 0,1⁰С, пульс в среднем был равен 80,5 ± 0,4 ударов в минуту, дыхание 20,4 ± 0,5. Термометрию и клиническое обследование овец проводили также и после вакцинации.

Для проведения опыта были сформированы 2 опытные и 1 контрольная группы по 10 животных в каждой. Животных иммунизировали перед осеменением. Перед вакцинацией сыворотки крови всех овец исследовали на листериоз в РА (для определения фона антител).

Первая группа – вводили внутримышечно 1,5 мл вакцины сухой живой ассоциированной против листериоза овец из штамма «АУФ» в область внутренней поверхности бедра. Через 10 дней проводили ревакцинацию животных той же вакциной в дозе 3,0 мл.

Вторая группа – вакцинировали аналогично и одновременно делали инъекцию Лигфола в дозе 1,0 мл на животное.

Третья группа – вводили физраствор внутримышечно в дозе 1 мл на животное.

С целью изучения динамики накопления антител при различных методах иммунизации в процессе опытов кровь для постановки РА с листериозным антигенами у овец брали также через 14, 30, 90 дней после иммунизации. Определяли количество эритроцитов, гемоглобина, общего белка.

О реактогенности вакцины судили по общему состоянию животного, аппетиту, температуре тела, воспалительной реакции в месте введения биопрепаратов.

В процессе проведенной работы были получены следующие результаты (Таблица 11).

Результаты постановки РА сывороток крови овец в трех опытных

группах с сальмонеллезным и листериозным антигенами

В первой группе животных до иммунизации сыворотка крови оказалась негативной по отношению к возбудителю листериоза. Через 14 дней после вакцинации у овцематок выявились антитела против возбудителя листериоза в титре 1:160 (p < 0,001). Максимальное накопление титров выявилось на 30 день после иммунизации и составило в среднем - листериозных 1:240 (p < 0,05). Через 90 дней после вакцинации титры антител удерживались на достаточном уровне, но имело место их снижение. Титр антител против листериоза составил 1:160 (p < 0,001).

Во второй опытной группе овец достоверное накопление титров антител отмечалось на 14 день после иммунизации. Выявлены антитела против возбудителя листериоза в титре 1:200 (p < 0,001), что выше аналогичных показателей у животных первой группы. Наибольшие титры установлены на 30ый день после вакцинации: против возбудителя листериоза 1:280 (p < 0,05), что также превышает уровень антител в сыворотке крови овец первой группы. Через 90 дней после иммунизации титры антител снижались и составили 1:160 (p < 0,001).

В третьей опытной группе животных сыворотка крови оказалась негативной по отношению к возбудителю листериоза.

Анализируя полученные данные можно сделать вывод, что при иммунизации овец с использованием сухой живой ассоциированной вакцины против листериоза овец из штамма «АУФ» в сочетании с адаптогеном стресс-корректором Лигфолом имеет место наибольшее накопление титров антител в сыворотке крови овец против возбудителей листериоза уже на 14 день после вакцинации, на 30 день отмечалось их максимальной повышение, на 90 день титры антител начинали снижаться.

Результатами исследований по изучению динамики гематологических показателей установлено, что при иммунизации животных количество эритроцитов и гемоглобина находилось в пределах физиологической нормы (Таблица 12).

Динамика гематологических показателей опытных овцематок

Содержание общего белка в сыворотке крови овец опытных групп на 14 день после иммунизации недостоверно снизилось и составило: в первой группе 84,0 ± 0,5, во второй 82,8 ± 0,3, в контрольной третьей группе 86,0 ± 0,6г/л. На 30 день после вакцинации установлено достоверное повышение указанного показателя: у животных первой группы — 87,0 ± 0,2г/л; во второй группе – 88,3 ± 0,4г/л. в третьей группе уровень общего белка несколько снизился и составил 83,0 ± 0,2г/л (норма 73-9 г/л для овец в сентябре-октябре). Через 90 дней после иммунизации содержание общего белка в первой и второй группе несколько снизилось и стало, соответственно, 86,0 ± 0,5 и 87,0 ± 0,1г/л, а в третьей группе отмечалось его недостоверное увеличение и составило, в среднем, - 84,0 ± 0,8г/л (Таблица 13).

Содержание общего белка в сыворотке крови опытных овцематок

Опыты показали, что в течение поствакцинального периода отклонений в общем состоянии организма овец второй опытной группы не наблюдалось, за исключением незначительного снижения аппетита у отдельных животных на первый день после вакцинации.

У животных 1 группы в течение 3-4 дней после вакцинации отмечалась припухлость на месте введения вакцины против листериоза в области внутренней поверхности бедра и незначительная хромота, которая усиливалась после ревакцинации животных. Температура тела повышалась в течение 1-2 дней на 0,5 - 1,0⁰С после иммунизации и на 0,4 - 1,2⁰С после ревакцинации. Через 3 дня после иммунизации и ревакцинации у всех животных температура тела снижалась до нормы.

В результате наблюдения за животными во время осеменения, суягности, родов и послеродового периода установлено следующее (Таблица 14). Во всех группах животные проявили стадию возбуждения полового цикла и были осеменены; оплодотворяемость овцематок в опытных группах составила 100%; плодовитость: 110% (1 группа), 120% (2 группа). В контрольной группе объягнились 90% животных. Абортов, патологии родов и послеродового периода у овцематок не наблюдалось (Таблица 14).

Показатели репродуктивной функции иммунизированных овцематок

Что делать, если нет взаимности? А теперь спустимся с небес на землю. Приземлились? Продолжаем разговор...

Что вызывает тренды на фондовых и товарных рынках Объяснение теории грузового поезда Первые 17 лет моих рыночных исследований сводились к попыткам вычислить, когда этот...

Живите по правилу: МАЛО ЛИ ЧТО НА СВЕТЕ СУЩЕСТВУЕТ? Я неслучайно подчеркиваю, что место в голове ограничено, а информации вокруг много, и что ваше право...

ЧТО ТАКОЕ УВЕРЕННОЕ ПОВЕДЕНИЕ В МЕЖЛИЧНОСТНЫХ ОТНОШЕНИЯХ? Исторически существует три основных модели различий, существующих между...

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском гугл на сайте: