Контроль состояния воспроизводства овец на основании проведения акушерско-гинекологической диспансеризации

В настоящих условиях реформирования сельскохозяйственного производства всё острее встают вопросы интенсивного воспроизводства стада. Для контроля состояния воспроизводства в овцеводческих хозяйствах необходимо проводить акушерско-гинекологическую диспансеризацию. Это позволяет осуществлять контроль за состоянием воспроизводства овец, своевременно выявлять больных животных и проводить профилактические и лечебные мероприятия.

Акушерско-гинекологическая диспансеризация – это комплекс диагностических, лечебных и профилактических мероприятий, направленных на выявление причин и форм бесплодия самок, восстановление воспроизводительной функции и их высокой продуктивности (Шипилов В.С. и др., 2000).

В овцеводческих предприятиях акушерско-гинекологическая диспансеризация должна проводиться в период их осеменения и после родов - планово, в период суягности животных – при необходимости (см. схему). При этом важное значение имеет последовательное соблюдение всех этапов, систематичность, проведение мероприятий в течение года в связи с особенностями технологии выращивания овец и их физиологии).

Основные задачи акушерско-гинекологической диспансеризации овец:

1. Изучение физиологического состояния животных путем общего клинического исследования.

2. Диагностика состояния репродуктивных органов овцематок в период полового цикла.

3. Выявление наиболее характерных признаков патологических изменений в половых органов с применением акушерско-гинекологического исследования. Прогнозирование патологии родового акта.

4. Постановка точного диагноза заболевания. Определение полного состава возбудителей инфекций.

5. Разработка схем лечебных и профилактических мероприятий.

В связи с противоречиями о сроках проведения акушерско-гинекологической диспансеризации овец в производственных условиях в «ИП Гаспарян», Щелковского района Московской области нами было проведено обследование 300 овцематок романовской породы в возрасте от 1,5 до 4,5 лет. В период осемененияовец проводили исследование животных непосредственно перед осеменением, а также изучали причины отсутствия стадии возбуждения у маток в течение двух половых циклов.

Животных подвергали клиническому обследованию, определяли показатели естественной резистентности организма – фагоцитарную функцию лейкоцитов, бактерицидную, лизоцимную активность сыворотки крови, фагоцитарную активность нейтрофилов маточной слизи.

Фото5. Проведение клинического обследования овец

Обследованные животные были клинически здоровы, но 10 овцематок имели нижесреднюю упитанность.

Выборочно у 30 клинически здоровых овец со средней упитанностью исследовали показатели неспецифической резистентности организма (Табл. 5).

Показатели неспецифической резистентности организма клинически здоровых овец

Показатели естественной резистентности организма обследованных овцематок находились в пределах нормы при этом физиологическом состоянии.

У 10 овцематок, имеющих нижесреднюю упитанность, эти показатели были снижены (Таблица 6).

Показатели неспецифической резистентности организма овец, имеющих нижесреднюю упитанность

В результате проведенного обследования 300 животных было установлено, что в первые 17 дней в охоту пришли и были осеменены 180 овцематок (60%), в последующие 17 дней 65 (22%). Не пришли в охоту в течение двух половых циклов 55 овцематок (18%).

С целью исключения инфекционных заболеваний применяли бактериологическую диагностику с идентификацией и типизацией выделенных микроорганизмов, методы серологических исследований, люминесцентной микроскопии, ИФА, ПЦР и др.

В результате проведенных лабораторных исследований у овец были выделены возбудители сальмонеллеза, кампилобактериоза, листериоза, хламидиоза в разных ассоциациях. Клинических проявлений указанных заболеваний выявлено не было. Животные являлись микробоносителями.

Овцематок, не проявляющих половой охоты, подвергали акушерско-гинекологическим исследованиям с использованием специальных лабораторных тестов, включающих цитохимический анализ влагалищных мазков, исследование влагалищной слизи и патоморфологические исследования участков полового аппарата животных с целью изучения особенностей протекания патологических процессов.

Фото 7,8,9 Проведение акушерско-гинекологичеких исследований овец

При проведении цитохимического анализа влагалищных мазков определяли показатели пероксидазной активности в эпителиальных клетках мазков влагалищной слизи овцематок. В основе этого цитохимического теста лежит зависимость уровня активности пероксидазы в эпителиальных клетках влагалищных мазков от уровня концентрации эстрадиола в организме овец. Этот фермент обеспечивает проходящий в пероксисомах путь свободного окисления веществ, посредством которого происходит обезвреживание ряда токсически действующих и нежелательных для организма веществ. Пероксисомы содержат системы, генерирующие перекись водорода и каталазу, которая при низких концентрациях обладает пероксидазной активностью. Они осуществляют антимикробную, пищеварительную функцию и участвуют в процессах синтеза. Пероксидаза, обеспечивая биосинтез ряда биологически важных веществ (стероидных гормонов), взаимопревращение некоторых аминокислот, является движущим звеном метаболизма (В.А. Усольцева, 1973). Проведенный нами анализ показал следующее (Таблица7).

Динамику активности пероксидазы определяли посредством подсчета количества пероксисом, которые выявлялись в виде четких коричнево-черных гранул в цитоплазме эпителиальных клеток влагалищных мазков овцематок с нарушением воспроизводительной функции и нормальным проявлением полового цикла.

В результате исследования влагалищных мазков здоровых овец и животных с отсутствием половой охоты было установлено среднее содержание гранул пероксидазы в цитоплазме клеток: 14,95 ± 0,6 (при нормальном половом цикле) и 0,92 ± 0,1 (при патологии).

У овцематок с нормальным половым циклом гранулы пероксидазы были хорошо окрашены, округлой формы, распределялись по всей цитоплазме эпителиальных клеток влагалищных мазков. У животных с отсутствием половой охоты распределение пероксисом в цитоплазме была крайне неравномерна, общее количество гранул фермента сильно снижено по сравнению с нормой, в некоторых клетках они не были обнаружены совсем. Окраска внутриклеточных включений у больных животных была слабее по сравнению с нормой. Таким образом, на основании проведенных исследований было установлено снижение активности фермента пероксидазы в эпителиальных клетках влагалищных мазков овцематок с отсутствием половой охоты по сравнению с овцематками с нормальным половым циклом. Исходя из того, что уровень активности пероксидазы в эпителии влагалища зависит от уровня концентрации эстрадиола в организме животного, мы сделали вывод о его низкой эстрогенной насыщенности, что свидетельствует о существенных гормональных нарушениях, происходящих в результате воздействия различных экзогенных и эндогенных факторов.

Содержание пероксидазы в эпителиальных клетках влагалищных мазков овцематок при нормальном половом цикле и при отсутствии половой охоты

В результате исследования 10 проб цервикальной слизи овцематок не проявляющих стадии возбуждения полового цикла в 6 пробах (60%) мукополисахариды были разрушены (отрицательный результат), в 4 пробах (40%) образовался сгусток, который не разрушался при встряхивании (положительные результаты). В пробах цервикальной слизи от овец с нормальным половым циклом (n = 10) мукополисахариды были разрушены в 1 пробе – 10% (отрицательный результат), образование сгустка (наличие мукополисахаридов) отмечалось в 9 пробах – 90% (положительные результаты). Таким образом, у овец с нарушением стадии возбуждения полового цикла зарегистрировано разрушение мукополисахаридов маточной слизи в 6 раза чаще, чем у животных с нормальным половым циклом, что также подтверждает снижение неспецифических иммунных факторов местной защиты.

При проведении патоморфологической диагностики были выявлены следующие изменения.

Проводимый нами гистологический анализ различных участков половых органов бесплодных овец показал морфофункциональные изменения, связанные с гипофункцией. Наблюдалось нарушение структуры эпителиальных клеток маточных желез, десквамация и атрофия железистого эпителия, уплотнение некоторых участков стромы тела матки за счет разрастания соединительной ткани, клеточная инфильтрация эпителия отдельных складок рогов матки. В некоторых участках отмечалось расслоение мышечного слоя. В яичниках наблюдали отсутствие вторичных и зрелых фолликулов в корковом слое, разрастание соединительной ткани в некоторых участках, утолщение стенки сосудов стромы яичника.

В период суягности проводили обследование больных (абортировавших) животных и наблюдение за матками - микробоносителями, выявленными в процессе проведения первого этапа акушерско-гинекологической диспансеризации. Больных животных исследовали путем применения методов клинической, акушерско-гинекологической диагностики, проводили патоморфологические и бактериологические исследования абортированных плодов с целью исключения стационарных инфекций. Больных и микробоносителей метили и изолировали.

Перед родами с целью прогнозирования их течения у овцематок выборочно проводили цитохимические исследования влагалищных мазков. Проводили также определение фагоцитарной активности нейтрофилов и количества глюкозоаминогликанов в маточной слизи, как факторов местной защиты в половом аппарате овцематок.

В результате проведения комплексных исследований было установлено, что основной причиной абортов овец являются возбудители сальмонеллеза, кампилобактериоза, листериоза, хламидиоза.

В послеродовой периодосуществляли клиническое, гинекологическое обследование овец на 7, 14, 20 день с целью контроля послеродовой инволюции матки с исследованием лохий и выявления патологических процессов.

У больных животных изучали особенности течения патологического процесса - исследовали экссудат при эндометритах с определением их клинических форм, выявляли и идентифицировали в лаборатории возбудителей инфекции, используя специальные лабораторные методы исследования: бактериологический, серологический, иммунофлуоресцентный, ПЦР.

Проводили исследование влагалищной слизи овцематок для диагностики функционального состояния половых органов.

1. Исследовали пробы слизи (экссудата) в физиологические периоды полового цикла и при изучении критериев патологических процессов. Одновременно оценивали послеродовую инволюцию матки (по стадиям), определяли соответствие цвета и консистенции выделений стадиям инволюции. Для получения проб маточной слизи мы использовали «акушерскую ложку Панкова» (АЛП).

В первые 7 дней после окота АЛП хорошо входит во влагалище до шейки матки, заполняется лохиями, характерными по консистенции и цвету стадиям инволюции (от темно-красного цвета и жидкой консистенции до прозрачной густой слизи). На 14-15 день после окота в ложечке содержалось небольшое количество мутноватой или прозрачной слизи, у здоровых маток в этот период выделения лохий заканчивается. К 21-му дню после ягнения АЛП лишь частично входила во влагалище, лохии отсутствовали.

2. Определяли формы клинических эндометритов, исследуя экссудат на цвет, запах, консистенцию, рН, учитывали показатели акушерско-гинекологического и общего клинического исследования, а также особенности течения болезни.

С целью диагностики критериев патологических процессов также использовали АЛП.

При всех формах клинически выраженного эндометрита слизистая оболочка преддверия влагалища была гиперемирована с синюшным оттенком. Акушерская ложка легко входила во влагалище овцы, всегда была заполнена экссудатом, характерным для различных форм эндометритов.

При этом при различных формах эндометритов были установлены следующие изменения:

-при остром гнойно-катаральном эндометрите – на 5-6 день после ягнения экссудат был слизисто-гнойный, жидкой консистенции, желто-бурого цвета с неприятным запахом.

-при катарально-гнойном эндометрите – на 10-12 день после ягнения экссудат имел вид мутной слизи с примесью желтовато-серых хлопьев и прожилок гноя.

-при послеродовом фибринозном или гнойно-фибринозном эндометрите экссудат был серо-коричневого цвета, жидким с примесью фибрина в виде плотных крупинок или полужидкий с примесью фибрина и прожилок гноя.

-при послеродовом некротическом эндометрите экссудат был красно-бурого цвета со сгустками фибрина и примесью крошкообразных некротических масс, имел зловонный запах. Слизистая оболочка влагалища болезненная, животное угнетено.

-при хроническом эндометрите – через 30 дней после ягнения образец содержал мутный слизисто-гнойный экссудат сливкообразной консистенции с примесью прожилок гноя.

По мере выздоровления животных в пробе из влагалища уменьшалось содержание примесей фибрина, гноя, слизь густела, светлела и становилась прозрачной.

Проведение разработанной нами акушерско-гинекологической диспансеризации, а также в последующем лечебно–профилактических мероприятий позволило в ряде сельскохозяйственных предприятий Московской области снизить процент заболеваемости овец с 40 до 10%, повысить плодовитость овцематок до 110%, а сохранность молодняка – до 96%. Были установлены причины нарушения у них половых циклов. В последующем осуществлялись мероприятия по стимуляции половой функции, повышению неспецифической резистентности организма овцематок (применение адаптогена стресс–корректора Лигфол), проводились общие и специфические профилактические мероприятия с использованием дезинфицирующего средства нового поколения Дезконтен и путем проведения комплексной вакцинации с применением препарата Лигфол.

Рис.1 Схема проведения акушерско-гинекологической диспансеризации овец (Гнездилова Л.А., 2004)

3.4 Применение адаптогена стресс-корректора Лигфол для профилактики патологии послеродового периода у овцематок

Одной из причин симптоматического бесплодия у овцематок является патология родов, которая встречается у 4,9 – 34% животных. Нарушение технологии содержания и кормления, дисбаланс параметров микроклимата животноводческих помещений, зооветеринарные мероприятия являются серьезными стресс-факторами для беременных овец. Развитию акушерско-гинекологической патологии способствуют изменения, происходящие в организме животных: нарушение нейро-гуморального регулирования, обмена веществ, процесса кроветворения, иммунной защиты, снижение естественной резистентности. Результат всего этого - аборты, патология родов, задержание последа, субинволюция матки, развитие внутриутробной гипоксии молодняка.

С целью решения этих проблем в период беременности и родов овцематок нами проводились испытания адаптогена стресс-корректора Лигфол совместно с сотрудниками Ставропольского НИИЖК. Это композиционный препарат, основным действующим началом которого являются гуминовые кислоты. В состав препарата входят: гуминовые кислоты, натрия пирофосфат десятиводный, натрия хлорид и деминерализованная апирогенная вода. Это стерильный препарат в форме инъекционного раствора для парентерального применения.

В России изучение применения гуминовых препаратов в качестве кормовой добавки для сельскохозяйственных животных начаты в 60-х годах и продолжаются до настоящего времени. Накоплен большой экспериментальный материал, подтверждающий, что гуминовые вещества обладают широким спектром биологической активности, оказывая воздействие на обменные процессы в организме животных и человека. Они поставляют микроэлементы, обогащая иммунную систему, что дает животным возможность эффективно противостоять болезням. Гуминовые препараты применяются в качестве биологических стимуляторов при выращивании сельскохозяйственных животных. Активизируют рост и развитие, повышают продуктивность, снижают заболеваемость и отход молодняка.

Установлено, что гуминовые вещества влияют на регуляторные системы клетки. Механизм их фармакологического действия связан с интенсификацией синтеза белка и иммунореактивных факторов клетками организма животных и птиц (А.М. Беркович, В.С. Бузлама, 2006).

Гуминовые, фульвокислоты, пиримидины, аминокислоты влияют на аденилатциклазную систему клетки и систему ферментов, ответственных за синтез олигоаденилата – медиатора действия интерферона. В частности их действие опосредуется одновременной активацией АЦ (аденилатциклазы) и ингибированием ФДЭ (фосфодиэстеразы), что приводит к усилению синтеза цАМФ (аденозинмонофосфатазы). Повышение внутриклеточной концентрации цАМФ может приводить к биологическим эффектам в зависимости от типа клетки и её состояния в данный момент. Происходит регуляция ферментов углеводного и жирового обмена, иммунных реакций, факторов естественной резистентности организма (А.М. Беркович, В.С. Бузлама, 2003).

Учитывая данные предпосылки перед нами была поставлена задача оценить возможность использования адаптогена стресс-корректора Лигфол для повышения естественной резистентности организма овец в период ягнения, для профилактики патологий родов и послеродовых осложнений, а также для улучшения продуктивных качеств ягнят.

В ООО СП «Гвардеец», Красногвардейского района, Ставропольского края из овцематок ставропольской породы возраста 1,5 лет были сформированы опытная и контрольная группы по 15 голов в каждой. Проводили клинические, акушерско-гинекологические обследования животных.

За 10 дней до ягнения овец инъецировали Лигфолом в дозе 1мл на животное в опытной и физраствором (1мл) в контрольной группе. Через 5 дней после обработки проводили контроль естественной резистентности организма овцематок, определяли неспецифические иммунные факторы местной защиты, проводили биохимический, физико-химический, морфологический анализ крови. Определяли содержание эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина, общего белка, АлАТ, АсАТ, глюкозы, резервной щелочности, железа. Проводили контроль показателей естественной резистентности организма. Определяли бактерицидную, лизоцимную активность сыворотки крови, фагоцитарную функцию. Изучали неспецифические иммунные факторы местной защиты – фагоцитарный индекс и % фагоцитоза в мазках маточной слизи.

Для изучения воздействия факторов внешней среды на организм овцематок в опытных и контрольных группах устанавливали фагоцитарную активность нейтрофилов и количество глюкозоаминогликанов в маточной слизи.

Метод определения фагоцитарной активности нейтрофилов маточной слизи основан на визуальном учете числа бактерий, захваченных нейтрофилами в процессе естественного фагоцитоза в полости матки животного. Мазки маточной слизи высушивали на воздухе, фиксировали метиловым спиртом, окрашивали по Романовскому-Гимза и микроскопировали. При этом оценивали захватывающую способность нейтрофилов по двум показателям: фагоцитарному индексу (количество бактерий, захваченных одним нейтрофилом) и проценту фагоцитоза (отношение количества нейтрофилов, участвующих в фагоцитозе, к общему числу подсчитанных).

Метод определения мукополисахаридов в маточной слизи заключается в том, что при наличии мукополисахаридов в исследуемой пробе добавление к ней 1 мл 1%-го раствора уксусной кислоты вызывает образование сгустка, который не разрушается при встряхивании. Учет реакции проводили через 6, 12, 24, 48, 72 часа.

За 5-6 дней до ягнения – повторные инъекции Лигфола (1мл на животное) и физраствора (1 мл на животное) в обеих группах.

В период ягнения провели клинические, акушерско-гинекологические обследования животных опытной и контрольной группы. Учитывали при рождении живую массу ягнят в опытной и контрольной группе, количество случаев патологических родов, послеродовых осложнений, мертворождения ягнят с определением основных причин отхода (патологоанатомические, гистологические, бактериологические исследования). На 7 сутки после ягнения контроль естественной резистентности организма овцематок, биохимические, физико-химические, морфологические исследования крови (по вышеуказанным показателям).

Через 14 дней после ягнения овец определяли процент заболеваемости ягнят, полученных от овцематок опытной и контрольной групп. Определяли естественную резистентность организма овец, проводили биохимические, морфологические, физико-химические исследования крови.

Через 4 месяца после ягнения овец (отбивка ягнят) проводили оценку качества потомства (ягнят), полученных от овец обеих групп. Определяли процент сохранности поголовья, живую массу молодняка при отбивке, высоту в холке, косую длину туловища, глубину, ширину, обхват груди, пясти.

Анализ результатов проведенных исследований показал, что двукратное введение Лигфола в дозе 1 мл на овцематку не оказывает отрицательного влияния на животных до и после родов. Все показатели крови овец в процессе эксперимента находились в пределах физиологических норм. Установлено достоверное повышение количества эритроцитов в крови овцематок опытной группы в послеродовой период по сравнению с контролем. Данные сочетаются с уровнем гемоглобина, что подчеркивает усиление процессов кроветворения у животных после применения Лигфола.

Достоверная разница в показаниях общего белка на 14е сутки после родов подтверждает активацию обменных процессов, улучшение пристеночного пищеварения, клеточного метаболизма (что подтверждается повышением активности трансаминаз). Уровень резервной щелочности, глюкозы, железа не понизился в крови животных опытной группы.

На основании представленных данных можно утверждать, что введение Лигфола не провоцирует нарушений обменных процессов и дисфункций внутренних органов, гомеостаза, не вызывает изменений в биохимической картине крови, характерных для токсигенных процессов.

При изучении показателей естественной резистентности организма животных отмечено повышение в опытной группе всех показателей: лизоцимной, бактерицидной активности сыворотки крови, фагоцитарной функции в динамике проведения исследований (Таблица 8, Рис. 2,3,4,5,6).

Результаты исследования крови и маточной слизи овцематок при испытании препарата Лигфол

В опытной группе овцематок бактерицидная активность сыворотки крови после введения препарата Лигфол увеличилась в динамике на 6,2% к 14 дню после родов (с 52,4% до 58,6%), в контрольной группе на 0,6%. Прирост показателя бактерицидной активности в опытной группе повысился в 9,4 раза по сравнению с контролем (Рис. 2).

Показатель лизоцимной активности сыворотки крови животных опытной группы увеличился после инъекций препарата в динамике на 1,57 % в контрольной на 0,68 %. Прирост показателя лизоцимной активности в опытной группе повысился в 2,3 раза по сравнению с контролем (Рис.3).

Установлено также достоверное повышение фагоцитарной активности крови овец в опытной группе к 14 дню после родов, в то время как в контрольной после родов у животных имело место снижение указанного показателя (Рис. 4).

В результате проведения исследования маточной слизи животных установлено повышение факторов местной защиты организма овцематок в результате применения препарата Лигфол. Важность этих тестов обусловлена тем, что мукополисахариды слизистых оболочек гениталий играют важную местную защитно-барьерную функцию. С одной стороны, они адсорбируют микробы, клеточные элементы, продукты распада белков и микробов и этим механически очищают половые органы овец. С другой стороны, препятствуют проникновению вирусов в эпителиальные клетки, подавляют рост и развитие бактерий и грибов. Разрушение мукополисахаридов слизистых оболочек гениталий и, соответственно, маточной слизи способствует развитию воспалительных процессов в матке. У животных опытной группы в результате применения препарата Лигфол регистрировалось разрушение мукополисахаридов маточной слизи в 3 раза реже, чем у животных контрольной группы. Отмечено также увеличение в 1,4 раза уровня фагоцитоза нейтрофилов маточной слизи у овец опытной группы после ягнения по сравнению с животными контрольной группы. (Рис. 5).

В ходе эксперимента было установлено, что после применения Лигфола у овец после родов в 1,5 раза повысился фагоцитарный индекс нейтрофилов маточной слизи по сравнению с животными, которым инъецировали физиологический раствор (Рис.6).

Таким образом, анализируя полученные результаты, мы пришли к выводу, что применение овцематкам перед родами адаптогена стресс-корректора Лигфола увеличивает общую резистентность организма беременных животных, повышает неспецифические иммунные факторы местной защиты.

При бактериологическом исследовании послеродовых маточных выделений от овцематок контрольной группы в 60% проб (в 9 из 15) были выделены микроорганизмы: стафилококки, гноеродная палочка, кишечная палочка, диплококки. В то время, как у животных опытной группы отмечено наличие указанных микроорганизмов в 20% проб (в 3 из 15).

Считаем, что применение Лигфола профилактирует патологии родов и послеродового периода, способствует рождению здорового жизнеспособного потомства. Подтверждением этого является отсутствие случаев заболеваемости овец опытной группы в процессе эксперимента. У всех животных благополучно прошли роды, не было зарегистрировано субинволюции матки, задержания последа, послеродовых эндометритов. Родились полноценные здоровые ягнята.

Имело место достоверное увеличение живой массы баранчиков и ярочек при рождении, полученных от овцематок опытной группы (в среднем 4,43 ± 0,33кг и 3,87 ± 0,12кг, соответственно) по сравнению с живой массой ягнят контрольной группы (4,17 ± 0,46 кг и 3,68 ± 0,33кг).

В результате анализа заболеваемости ягнят через 14 дней после родов в контрольной группе установлена заболеваемость 2 ягнят контрольной группы: №1678 и № 1394, что составило 20% от количества животных в группе. У молодняка отмечалось отсутствие аппетита, депрессия, атаксия, диарея. Фекалии жидкой консистенции, желто-серого цвета. Температура 39,5⁰ и 39,9⁰С, пульс 155 и 157, дыхание 47 и 54, соответственно. В дальнейшем, ягненок №1678 пал, а ягненок № 1394 в результате проводимого лечения выздоровел.

Таким образом, в результате проведенных исследований было установлено, что:

1. Двукратное введение Лигфола в дозе 1 мл на овцематку не оказывает отрицательного влияния на животных до и после родов. Все показатели крови овец в процессе эксперимента находились в пределах физиологических норм. На основании представленных данных можно утверждать, что введение Лигфола не провоцирует нарушений обменных процессов и дисфункций внутренних органов, гомеостаза, не вызывает изменений в биохимической картине крови, характерных для токсигенных процессов.

2. Установлено достоверное повышение количества эритроцитов в крови овцематок опытной группы в послеродовой период по сравнению с контролем. Данные сочетаются с уровнем гемоглобина, что подчеркивает усиление процессов кроветворения у животных после применения Лигфола.

3. Достоверная разница в показаниях общего белка на 14е сутки после родов подтверждает активацию обменных процессов, улучшение пристеночного пищеварения, клеточного метаболизма (что подтверждается повышением активности трансаминаз). Уровень резервной щелочности, глюкозы, железа не понизился в крови животных опытной группы.

4. При изучении показателей естественной резистентности организма животных отмечено повышение в опытной группе всех показателей: лизоцимной, бактерицидной активности сыворотки крови, фагоцитарной функции в динамике проведения исследований.

5. В результате проведения исследования маточной слизи животных установлено повышение факторов местной защиты организма овцематок в результате применения препарата Лигфол.

6. Считаем, что применение Лигфола профилактирует патологии родов и послеродового периода, способствует рождению здорового жизнеспособного потомства.

Подтверждением этого является отсутствие случаев заболеваемости овец опытной группы в процессе эксперимента. У всех животных благополучно прошли роды, не было зарегистрировано субинволюции матки, задержания последа, послеродовых эндометритов. Родились полноценные здоровые ягнята.

ЧТО ТАКОЕ УВЕРЕННОЕ ПОВЕДЕНИЕ В МЕЖЛИЧНОСТНЫХ ОТНОШЕНИЯХ? Исторически существует три основных модели различий, существующих между...

Конфликты в семейной жизни. Как это изменить? Редкий брак и взаимоотношения существуют без конфликтов и напряженности. Через это проходят все...

Что будет с Землей, если ось ее сместится на 6666 км? Что будет с Землей? - задался я вопросом...

ЧТО ПРОИСХОДИТ, КОГДА МЫ ССОРИМСЯ Не понимая различий, существующих между мужчинами и женщинами, очень легко довести дело до ссоры...

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском гугл на сайте: